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His-tag蛋白純化篇
1.蛋白不吸附或親和力低
首先確認純化前的樣品中是否有目標蛋白。
（1）有目標蛋白，但大量穿透：
a、蛋白不含有標簽或未能正確表達
解決措施：Western Blot鑒定目標蛋白是否有His-Tag。若沒有，需要重新構建載體，添加組氨酸標簽，并確認標簽正確表達。
b、蛋白折疊導致組氨酸標簽未*暴露
解決措施：
在不變性條件下純化蛋白，在樣品和平衡緩沖緩沖液中加1-2M尿素，這樣蛋白結構相對松散，而蛋白不會變性。
在變性條件下純化蛋白，加入4~8M尿素或4~6M鹽酸胍使蛋白變性。如果蛋白有二硫鍵，可加1-2mM DTT或1~5mM巰基乙醇（在樣品中添加），可以改善蛋白的吸附。
重新構建載體，將組氨酸標簽換到另外一端，或在組氨酸標簽基因與目的基因之間增加一段Linker，可以降低蛋白折疊后標簽被掩蓋的幾率。
c、標簽太短
解決措施：將標簽的組氨酸數量增加至6-10個。
d、蛋白標簽被水解
解決措施：添加合適的蛋白酶抑制劑；盡量在低溫下處理樣品；對于分泌表達的蛋白，長時間存放將增加蛋白被降解的風險，應盡快處理樣品。
e、蛋白溶解度偏低或聚集
解決措施：在結合緩沖液中添加0.5%-1% Tween-20、Triton X-100，或5%~50%的甘油，可以增加蛋白的溶解度，減少蛋白聚集。
f、樣品及結合緩沖液不合適
解決措施：確認樣品及緩沖液中不含有EDTA、還原劑等。另外，將樣品及結合緩沖液pH調節至7.4~8.5，有利于蛋白結合。
（2）有目標蛋白，但含量很低：
蛋白表達量低。解決措施：對樣品進行濃縮，增加磁珠用量、延長反應時間；優化表達條件（誘導劑濃度、誘導溫度、誘導時間，培養基等）；或更換其他合適的表達載體或表達系統。
2.純化得到的蛋白量少
（1）磁珠用量不足。本產品磁珠懸液濃度為10%，對于親和力較高的蛋白，每毫升磁珠懸液可結合的蛋白量約為3~4mg。用戶需要根據目標蛋白含量，使用足夠量的磁珠。對于親和力較低的蛋白，需要增加磁珠用量，延長反應時間，或提高樣品及結合緩沖液pH。
（2）蛋白與磁珠親和力較低。參考問題1。
（3）蛋白濃度低。對樣品進行濃縮，或增加磁珠用量、延長反應時間。
（4）磁珠重復使用次數太多。將磁珠進行再生處理（參考產品說明書）。
3.洗脫產物雜帶多什么原因？怎么處理？
（1）雜蛋白吸附。由于組氨酸，色氨酸，半胱氨酸等是蛋白質中很常見基團，而蛋白折疊可能導致幾個這樣的氨基酸殘基臨近，這樣也會使它們和磁珠的作用力增加?？梢杂貌煌瑵舛鹊倪溥蜻M行梯度洗脫，在樣品及平衡緩沖液中添加0.5%吐溫或Triton X-100，或5~50%的甘油，可以避免因為疏水相互作用導致非特異吸附，或使用鈷離子螯合磁珠（BeaverbeadsTM IDA-Cobalt）。此外，要獲得純度較高的蛋白，需要對裂解、結合緩沖液、洗滌緩沖液、洗脫緩沖液的組分、pH、咪唑濃度等進行優化。若還是不能獲得高純度的蛋白，則需要考慮使用多步純化，結合使用離子交換、凝聚過濾等純化方法。
（2）菌體破碎條件太劇烈導致蛋白斷裂。確保在冰浴條件下破碎；降低超聲破碎的強度，縮短時間；適當稀釋樣品，添加核酸酶，降低樣品粘稠度。
（3）蛋白被部分水解。添加合適的蛋白酶抑制劑，并盡可能在低溫下操作。
4.目標蛋白難洗脫
穿透組分中目標蛋白明顯減少，而洗脫組分中目標蛋白很少，取少量磁珠加SDS-PAGE Loadding Buffer于95℃加熱5~10min，離心跑電泳，如果發現較多蛋白殘留。
（1）洗脫調節太溫和。提高洗脫液咪唑濃度至700mM還不能洗脫時，可以嘗試降低洗脫液pH至4.0，但低pH會也導致金屬離子脫落，磁珠需要再生后再使用。
（2）蛋白吸附在磁珠上無法洗脫。對于非特異性疏水吸附的蛋白，可以增加NaCl濃度至1M，或添加0.1%~2%的Triton X-100洗脫。對于聚集沉淀在磁珠上的蛋白（尤其注意含有二硫鍵的蛋白），可以在洗脫緩沖液中加入6M鹽酸胍進行變性洗脫。
5.磁珠再生后，蛋白純化效果變差怎樣改善?
（1）再生過程的堿處理可以改善再生磁珠的蛋白純化效果，參考海貍生物醫學《組氨酸標簽蛋白純化試劑盒》說明書中磁珠再生部分步驟4。
（2）重新掛金屬離子后為清洗干凈，需要增加洗滌步驟。殘留的金屬離子優先跟蛋白結合，影響蛋白與磁珠的結合。
6.緩沖液中咪唑添加的意義
（1）結合緩沖液中低濃度的咪唑是為了減少雜蛋白的非特異性吸附；
（2）洗滌緩沖液中低濃度咪唑是為了吸取吸附能力較弱的雜蛋白；
（3）洗脫液中高濃度咪唑是為了洗脫目的蛋白。
7.IDA-鎳和IDA-鈷的區別
IDA-鎳的蛋白載量高，40mg/mLgel，純度稍低，純度有90%。
IDA-鈷的蛋白載量稍低,25mg/mLgel,純度達到95%。
一般客戶建議購買IDA-鎳磁珠，即可達到目的。
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