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Western Blot,對于任何一個科研君都不陌生，但是，為甚么別人的實驗時間短、跑膠快、成像顯影辣么好看活生生的羨慕，嫉妒，hen (哼)，足足被甩了幾篇SCI„內(nèi)情你知否？
除了實驗精細(xì)化操作，選擇合適的實驗試劑，還有呢？當(dāng)然離不開你的優(yōu)化設(shè)計你對關(guān)鍵步驟的步步為營。
本文旨在通過提供建議，幫助您在短時間、以更少的終端用戶優(yōu)化調(diào)整得到預(yù)期結(jié)果，提升免疫印跡效果。PS：科研是不斷進(jìn)步的過程，有不當(dāng)之處，望指正。
何為蛋白印跡（WB）
蛋白印跡也稱作免疫印跡，是一種被廣泛應(yīng)用并得到*的技術(shù)，用于檢測細(xì)胞或組織提取物中的蛋白表達(dá)水平。
這一技術(shù)利用抗體與特定待檢測蛋白的結(jié)合，測定生物樣本中的蛋白水平。抗體與其靶點蛋白表位的結(jié)合可用于檢測蛋白質(zhì)中具有高度特異性的氨基酸序列。
一句話講完WB：就是抗原抗體反應(yīng)！
Western Blot 可以：
1.從蛋白質(zhì)混合物中檢出目標(biāo)蛋白質(zhì)；
2.定量或定性確定細(xì)胞或組織中蛋白質(zhì)的表達(dá)情況；
3.用于蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)、蛋白質(zhì)-DNA、蛋白質(zhì)-RNA相互作用后續(xù)分析。
以下，會從關(guān)鍵步驟入手，我們將給出試劑和實驗過程的建議，逐一介紹每個步驟中的一些關(guān)鍵注意點以及給出對應(yīng)優(yōu)化后的圖表，供大家參考
一、裂解產(chǎn)物制備 1.組織裂解
常見破碎組織的方法： 機械法、勻漿法、超聲波破碎解、研磨法，反復(fù)凍融法等；
實驗室常用的破碎方法： 1.超聲波； 2.電動研磨； 3.磁珠破碎法。（注意磁珠高速旋轉(zhuǎn)時產(chǎn)生的熱量比較多，需提前把機器放在冰箱制冷） 以上主要注意發(fā)熱引起的蛋白變性和聚集，操作過程中盡量減少細(xì)節(jié)上的差異，這樣才能保證實驗結(jié)果的重復(fù)性比較一致。
2.細(xì)胞裂解
一般裂解液包含以下幾個組分: 1. 緩沖系統(tǒng)； 2. 鹽離子； 3. 離液劑；
4. 蛋白酶抑制劑； 5. 還原劑
二、凝膠電泳
1.加入足量的樣品和分子量大小標(biāo)記物
SDS-PAGE 根據(jù)蛋白電泳遷移率將其分離，遷移率是蛋白大小和電荷的函數(shù)。
我們建議在預(yù)制 Tris-Glycine 小孔膠上樣20-40μg 全細(xì)胞裂解液或100ng純化蛋白，根據(jù)目標(biāo)蛋白的表達(dá)量優(yōu)化上樣量。
對于大分子量靶標(biāo)，我們建議采用 Tris-Acetate 凝膠和相關(guān)緩沖液。 應(yīng)在待測樣本附近的泳道始終加入分子量標(biāo)記物，作為參考點。 分子量標(biāo)記物（或梯狀條帶）是已知分子量的純化蛋白的混合物。
采用預(yù)染色標(biāo)記可以看見電泳過程中蛋白遷移的距離，隨后確認(rèn)經(jīng)電轉(zhuǎn)移至膜。 采用生物素標(biāo)記物可以看見膜上的梯狀條帶和抗體靶標(biāo)。
2.選擇合適的蛋白marker 預(yù)染蛋白marker應(yīng)用：
?實時監(jiān)控SDA-PAGE中的蛋白遷移
?檢驗western轉(zhuǎn)膜效率
?對蛋白大小進(jìn)行初略鑒定
?呈彩色且轉(zhuǎn)膜效果好
三、轉(zhuǎn)膜 1.濕轉(zhuǎn)移
把蛋白從凝膠轉(zhuǎn)移至膜上的濕轉(zhuǎn)移是指把濾紙-凝膠-膜-濾紙“三明治”*浸入緩沖液中。使用此方法時，在浸沒的情況下通過電泳轉(zhuǎn)移至 0.2 μm 孔徑硝酸纖維素膜，在冷卻的含 20% 甲醇的轉(zhuǎn)移緩沖液中轉(zhuǎn)膜，70V，1.5小時。
2.半干轉(zhuǎn)移
把蛋白從凝膠轉(zhuǎn)移至膜上的半干轉(zhuǎn)移是指將浸滿緩沖液的濾紙-凝膠-膜-濾紙“三明治”系統(tǒng)，置于本應(yīng)干燥的陽極和陰極板上。
在這一系統(tǒng)中，轉(zhuǎn)移在桌面上進(jìn)行，在室溫條件下約15-60分鐘。轉(zhuǎn)移低分子量和高分子量蛋白時這一系統(tǒng)均運轉(zhuǎn)良好，相較于濕轉(zhuǎn)移所需緩沖液更少，但是在某些情況下會產(chǎn)生更高的背景染色。（轉(zhuǎn)膜時不離人，監(jiān)測電流電壓）
3.干轉(zhuǎn)移
把蛋白從凝膠轉(zhuǎn)移至膜的干轉(zhuǎn)移是指不額外加入緩沖液的系統(tǒng)，因為陽極和陰極板系統(tǒng)中含有緩沖液基質(zhì)。對于較大分子量蛋白，觀察到信號差異zui大，表明轉(zhuǎn)移效率低。
（注意：在樣本量有限或待檢測蛋白低內(nèi)源水平的情況下，干轉(zhuǎn)移方法會限制您分析的靈敏度。）
四、封閉
建議轉(zhuǎn)移之后迅速在 Tris-Buffered Saline (TBS) 中洗滌膜，以便移除殘留的轉(zhuǎn)移緩沖液，隨后在室溫條件下含5% 脫脂牛奶的 Tris Buffered Saline 和 Tween® 20 去污劑 (TBST)中封閉1小時。這一封閉步驟有助于降低非特異性一抗結(jié)合并降低背景。應(yīng)避免膜封閉時間過長，因為這會掩蓋抗原表位，阻止抗體結(jié)合。封閉后在TBST 中洗滌5分鐘。
五、一抗、二抗孵育 1.加一抗與抗原結(jié)合
?一抗應(yīng)在含5% BSA 或5% 脫脂牛奶的 TBST 緩沖液中稀釋。
?一抗孵育時間會有很大的差別，具體取決于研究人員采用的操作流程。建議在4℃過夜孵育一抗。（過夜孵育提高抗體結(jié)合）
?免疫印跡操作流程的另一個存在差異的方面是洗滌和稀釋緩沖液。推薦抗體稀釋緩沖液和洗滌步驟使用TBST。(TBST 緩沖液產(chǎn)生更強的信號)
2.加二抗與一抗的結(jié)合
?建議在含 5% 脫脂牛奶的 TBST 中稀釋二抗。
?因為脫脂牛奶的封閉要更強，所以基于 BSA 的稀釋比基于牛奶的稀釋產(chǎn)生的背景明顯更強。
?如果對免疫沉淀細(xì)胞裂解物進(jìn)行免疫印跡實驗，考慮采用構(gòu)象或鏈特異性二抗，以避免 IgG 重鏈或輕鏈的信號。
這個步驟的成敗
關(guān)鍵看試劑質(zhì)量的好壞 用的抗體不到位 整個實驗都白費 有木有
六、檢測
一般使用辣根過氧化物酶HRP-ECL發(fā)光法或堿性磷酸酶AP-NBT/BICP顯色法。
1．HRP-ECL發(fā)光法：
將A、B發(fā)光液按比例稀釋混合。膜用去離子水稍加漂洗，濾紙貼角吸干，反貼法覆于A、B混合液滴上，熄燈至可見淡綠色熒光條帶（5min左右）后濾紙貼角吸干，置于保鮮膜內(nèi)固定于片盒中，迅速蓋上膠片，關(guān)閉膠盒，根據(jù)所見熒光強度曝光。取出膠片立即*浸入顯影液中1-2min，清水漂洗一下后放在定影液中至底片*定影，清水沖凈晾干，標(biāo)定Marker，進(jìn)行分析與掃描。
2．AP-NBT/BICP顯色法：
每片NBT/BICP可溶解于30ml水中，使用前將一片分裝在30個 EP管中，每張3×9cm的膜取一管配成1ml即可。將PBST或TTBS洗滌過的膜用去離子水稍加漂洗，濾紙貼角吸干，反貼法覆于NBT/BICP溶液液滴上，并用不透明物體（如報紙）遮擋光線，顯色20s后每10s觀察一次，至條帶明顯或有本底出現(xiàn)時將膜揭起置去離子水中漂洗后放濾紙上晾干即可觀察與掃描。背景深淺與一抗的質(zhì)量及二抗的量有關(guān)，當(dāng)然如果曝光時間長達(dá)半小時，出現(xiàn)背景是正常的。
明明白白做實驗，善其事前利其器，普通問題常規(guī)避，優(yōu)化成功沒問題
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